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脱细胞异体真皮基质皮下移植后胶原的动态变化
来源:未知点击:时间:2018-03-17 15:47作者:admin
【摘 要】
 的:探讨脱细胞异体真皮基质ADM移植后胶原的变化情况。
 法:将异体ADM移植于SD鼠皮下,测定移植后ADM中胶原的含量及型胶原的比例。
 果:异体ADM移植后胶原含量及型胶原比例无明显变化。
 论:异体ADM是一种良好的软组织填充材料。
关键词 脱细胞真皮基质;移植;胶原
 

脱细胞真皮基质(acellulardermalmatrixADM)去除了皮肤中的细胞成分,保留了真皮的基质成分。胶原蛋白(胶原)是构成真皮基质的主要成分,ADM移植后胶原的变化对其功能的发挥具有重要的意义。
 
一、材料与方法
 
1.异体ADM的来源:同种异体SD大白鼠处死后,浸于2%碘伏溶液中消毒,切取皮肤修剪成全厚皮片,厚约0.5mm,分别进行脱细胞、冷冻干燥及水化处理,制成脱细胞真皮基质。再切制成1cm×1cm大小的片状,置磷酸盐缓冲液中待用。
2.实验动物:SD系健康成年大白鼠,体重250g左右,雌雄不限(由中国农科院实验动物中心提供)。按取材时间不同分为5组,每组10只。
3.皮下移植的手术方法:SD鼠背部皮肤术前1天以脱毛剂脱毛,清洗干净。术日称体重,1%戊巴比妥钠30mg/kg体重,腹腔注射全身麻醉。术区皮肤2%碘伏溶液消毒,铺无菌巾单。背部中线右侧,距中线约0.5cm处作一个长1cm的切口。在皮肤与皮肌之间,向右侧分离,形成1cm×1cm大小的腔。植入异体ADM,其基底膜面均朝向皮肤,真皮面朝向皮肌,在腔隙内展平后,缝合切口。分笼常规饲养。
4.胶原含量的定量测定:移植手术后2周,1234个月时,循原切口切开皮肤,显露ADM,将其与周围组织分离后取出。将取出的新鲜组织标本经反复烘烤成干组织,经6mol/LHCl水解、0.05mol/L氯胺T氧化、10%对二甲氨基苯甲醛显色后,在波长为560nmUV-1601记录式分光光度计(日本Shimadzu公司产品)上进行比色,测定羟脯氨酸吸光度A值,根据羟脯氨酸标准曲线,计算出胶原的含量。
5.胶原分型定量测定:应用乙酸纤维素薄膜电泳将Ⅰ、Ⅲ型胶原分离,考马斯亮兰R250染色,75%乙酸-50%甲醇溶液脱色,除去未与蛋白质结合的染料,即可见清晰的两条电泳区带。将着色的各电泳区带剪下,配平,以0.12NNaOH-80%甲醇液将染色的蛋白质从薄膜上洗脱下来,在波长为580nmUV-1601记录式分光光度计上进行比色,测出样本吸光度A值,求其比值。
6.统计学分析方法:不同时期的组织标本以均数±标准差表示,采用SPSS10.0进行单因素方差分析(F检验),移植后不同时期的ADM与移植前的ADM进行两两比较(Dunnettt检验)

二、结 

移植后胶原含量、Ⅰ、Ⅲ型胶原比值的变化,差异均无显著性意义(P>0.05,表1)
 基础2
三、讨 

胶原蛋白分子的主要特征是氨基酸成分中羟脯氨酸(42羟脯氨酸)12%~14%,这种氨基酸在其它动物组织蛋白中是没有的(弹性蛋白除外),因此可将羟脯氨酸作为一个特殊的标志,定量测定水解后羟脯氨酸乃是胶原定量常用的方法。考马斯亮兰R250是一种蛋白质染料,由于其所含有的疏水基团与蛋白质的疏水微区具有亲和力,因此该染料能与蛋白质结合。当把蛋白质样品固定于纤维薄膜上,以考马斯亮兰R250与蛋白质作用,蛋白质即被染上颜色。将被染色的蛋白质从纤维薄膜上洗脱下来进行比色测定,即能定量测出蛋白质的浓度。胶原是一组在结构上既有共同特点又有差异的蛋白质总称,至少有五种不同的类型。在体内分布具有一定的组织特异性,皮肤中则含有Ⅰ和Ⅲ型胶原,Ⅳ型胶原仅存在于基底膜中[1]。人体内胶原总含量约占蛋白质总量的25%~33%,它们是身体的主要结构蛋白,是各种组织的重要成分。其主要功能是作为组织支持物,赋予了组织以张力。除此之外,胶原分子及其纤维在生物的发、生长、细胞分化及黏附、运动、化学趋向性以及抗原抗体结合反应等均起着重要的作用[1]
异体ADM移植后出现宿主成纤维细胞的移入和血管化,成纤维细胞在异体ADM提供的纤维支架上进行增殖,在产生胶原的同时,ADM不断得以改建,并处于动态平衡之中。研究表明异体ADM皮下移植后胶原含量和Ⅰ、Ⅲ型胶原的比值无明显变化,此乃ADM发挥功能所必需的物质基础。作为软组织填充材料,ADM移植后能较好地保留其原有的组织量,达到填充组织缺损的目的;作为真皮替代品,移植后能较好地覆盖创面,提供张力,促进表皮细胞的成活、黏附、分化和增殖[2]。进一步表明脱细胞真皮基质是一种良好的软组织填充材料和真皮替代品。
 
      
 
1 李玉瑞,细胞外间质的生物化学及研究方法,北京:人民卫生出版社,19882128
2 Ghosh MM,Boyce S,Layton C,et al. A comparison of methodologies for the preparation of human epidermal dermal compositesAnn Plast Surg,1997,39:390-404 .

 
(收稿日期:2002-08-21